对灭鼠剂的评价，首先应根据其灭鼠效果，同时亦需考虑对人和禽、畜等非靶动物的危害，涉及问题较多，需作一系列试验、观察。此外，尚应考虑生产难易、价格高低 溶解度大小、对抗剂有无等问题。对灭鼠剂的评价应包括以下项目。

毒力 对靶子动物具有足够毒力是灭鼠剂的先决条件。灭鼠剂的毒力分级与其他药物有所不同，其标准为：

“极毒”级灭鼠剂当使用人员接触纯品时，有一定危险性，需于出厂前稀释; “剧毒”级较合用; “毒”级对接受性差的啮齿动物效果不好; “弱毒”级使用浓度高，影响接受性，除个别例外，效果不佳; “微毒”级不用于灭鼠。

灭鼠剂的毒力，就药物本身，除与纯度密切相关外，亦与晶体结构以至细度等有关。以结构为例，红磷与白磷同素异构，其毒力迥异; 含有不对称碳原子的灭鼠剂，于立体异构体之间毒力亦可有较大差别。如杀鼠灵的两种异构体，对雄性大白鼠抗凝血作用可相差7～10倍，灭鼠宁与其异构体也有类似差别。以细度为例，亚砷酸颗粒直径为4.5μm者，对大白鼠的LD50为89mg/kg，直径为25μm者增至346mg/kg;安妥则恰相反，直径50μm者毒力显著高于5μm者。

给药途径对灭鼠剂毒力亦有影响。如毒鼠磷对小白鼠口服LD₅₀为13.5mg/kg，而经皮肤吸收则高达70mg/kg。灭鼠剂的给药次数有时亦与毒力有关，通常抗凝血灭鼠剂一次服药的毒力，远低于多次服药。

尚有一些因素可影响毒力。如α氯醛糖的主要作用为降低代谢，鼠死于体温下降，故环境温度越低，效果越好，高于18℃时不宜使用。又如，磷化锌灭鼠以褐家鼠喜食的肉类作诱饵，鼠的胃液分泌既快又多，促进磷化锌分解与吸收，其毒力可超过用粗面包作诱饵一倍以上。

灭鼠剂毒力对个体差异越小，越不易出现残存鼠，亦越合乎使用需要。应用毒力对个体差异大的灭鼠剂，为消灭耐受性强的个体，须提高使用浓度，如此不仅降低了毒饵的适口性，且对非靶动物亦更为危险。

灭鼠剂毒力的选择性，主要是指其对不同种动物间毒力的差别。选择性强系指对啮齿动物的毒力远远超过对其他动物。某些灭鼠剂于鼠种间存在明显选择性，由之影响其使用价值。现有灭鼠剂中，少数种类于动物间选择性过强，如安妥与灭鼠宁，仅对鼠属中某些种类毒力强，对其他啮齿动物基本无效。毒力选择性过强者，效果常不稳定，较易引起耐药性。灭鼠剂对同种鼠类的毒力亦可有较大差别。如多数褐家鼠对环庚烯敏感，但少数个体耐力甚大; 长爪沙鼠个体之间对毒鼠硅的敏感性亦可相差数百倍之多。

接受性和拒食 接受性指灭鼠剂混入诱饵后，啮齿动物对毒饵的接受程度，并非指纯药，诱饵或毒饵的接受性也可称为适口性。毒饵仅于吞食后才可发挥作用，故鼠类对其须具良好的接受性。灭鼠剂接受性好有两种可能，一为毒饵中的灭鼠剂对啮齿动物无味，未被察觉; 一为虽可察觉，但含量适当时可被接受，或并不厌弃。后者首次使用多有效，但残存动物常于一段时间内不再取食，连续使用效果较差。灭鼠剂中含有的某些杂质，可严重影响鼠的接受性。如杀鼠灵毒饵中如含0.01%的苯丙酮，消耗量即显著下降，用惰性物质包裹灭鼠剂细粉形成微囊，可于一定程度上掩盖不良气味，改善接受性，但不能增加毒杀率。

接受性差的极限为拒食。拒食也有两种情况： 一为首次接触即拒食，此类药物不可用于灭鼠，如苯硫脲; 二是第一次接触时，鼠可接受，但中毒恢复后，不再取食，如安妥。不同灭鼠剂引起的后一种拒食，持续时间亦有所不同。能否引起拒食，拒食程度的强弱等，均为评价灭鼠剂的重要依据。

测定灭鼠剂的接受性，每组需用鼠20～30只，雌雄各半，单个饲养或分组饲养。将灭鼠剂按实际使用比例加到适当诱饵中制成毒饵，同时用未加药的同种食物作对照，任鼠自由选食。死亡率超过80%者，有实用价值。此试验又称有选择接受性试验。亦可以摄食系数(毒饵消耗量/无毒食物消耗量)衡量接受性。通常认为，摄食系数超过0.3者为佳，不及0.1者为差。必要时，重复试验，或同时试验几种浓度的毒饵。测定时应注意： ①必须以野生靶子动物做试验; ②捕鼠地点一年内未用过受试灭鼠剂; ③盛放毒饵与无毒食物的器皿相同，定时互换位置; ④不得用鼠的日常饲料配制毒饵。

观察鼠类第二次遇到同种毒饵的接受性时，每组亦用鼠20～30只，单个饲养。先投以亚致死量毒饵，使之中毒，康复后，再与未经上述处理的正常对照组同时投予足量毒饵与无毒食物，任鼠选食。比较两组死亡率与摄食系数，即可作出判断。

抗药性 抗药性为妨碍灭鼠剂连续使用的又一障碍。引起抗药性的程度，为衡量灭鼠剂的重要指标之一(见“灭鼠剂抗药性”条)。

潜伏期 灭鼠剂的潜伏期是指从服药到出现不适症状所需的时间，其长短可直接影响效果。潜伏期短收效快，鼠常死于毒饵附近及开阔处，有利收集作为检验材料，如士的宁灭鼠剂。但潜伏期短者，常使部分个体于食足致死量前出现不适症状，中止取食而幸免于死，一旦恢复即成拒食个体。尚未接触毒饵的个体，亦可因同类突然大批发病或死亡受惊而拒食毒饵。对选择性差的灭鼠剂，若潜伏期甚短，亦不利于人、畜中毒急救。潜伏期长者，鼠类有充裕时间食够致死量毒饵，不易出现拒食个体，并有充分时间对误食者施救。鼠多死于洞内及隐蔽处，可减少天敌因食鼠尸而引起的二次中毒。一般潜伏期不宜短于2h。中毒时症状强弱，也可影响灭鼠效果。症状和缓，仅造成一般全身衰弱的灭鼠剂，如杀鼠灵，效果好，且不易引起拒食。

稳定性 灭鼠剂稳定，利弊兼有。稳定有利于毒饵配制与长期投饵，但迟迟不分解可增加禽、畜中毒机会。鼠尸内未分解的灭鼠剂也具引起二次中毒的危险。反之，过于不稳定，则保存困难，长期投饵易失效。除需长期投饵者外，理想的灭鼠剂应于配制毒饵前稳定，制成毒饵投放后，数天至十余天内失效。

危害性 灭鼠剂对非靶动物的危害性，一般仅选用几种有代表性禽、畜，如鸡、兔、羊、狗、猫等，作毒性初步试验，了解致死量的大致范围，并用鼠尸饲喂的方法，判断二次中毒的危险程度。也可将毒饵投放在禽、畜活动场所，观察是否被禽、畜取食。此类数据多于实际使用过程中积累，逐步作出结论。

灭鼠效果 灭鼠效果为灭鼠剂各方面特性的综合反映，每种灭鼠剂均须进行效果试验，以作为最终评价的根据。实验室灭鼠效果，可通过有选择接受性试验判定，也可另作只投毒饵的无选择接受性试验。某些不仅作单个笼养试验，而且需将20～30只鼠放在一个笼中作集群试验以观察互相干扰时的效果。通常认为，有选择接受性试验中死亡率达80%者，可进一步作现场试验。

现场效果试验需在不同生境分别进行。试验步骤包括：选择合适的试验地点，调查灭鼠前靶子动物的密度，将灭鼠剂制成毒饵灭鼠，调查灭鼠后靶子动物的密度，计算效果等。靶子动物应为试验地点内的优势种，其数量必须足够，同时半年内未用过任何毒饵。各试验区应间隔一定距离，周围有保护带，以防止未处理地区靶子动物的干扰。

灭鼠效果多以靶子动物密度的变化来表示。灭鼠前后密度调查的条件与方法应一致。可用夹线法、小方块法、饱和食物消耗法、线路观测法与鼠迹调查法等(见“啮齿动物种群数量估计法”条)。在灭效试验时，一般不用捕尽法。采用夹线法或小方块法时，因对鼠有干扰，且受气候影响，应于另一相似地区设不投毒饵对照区。调查所用诱饵与投饵方法等，应试用证明行之有效者。新灭鼠剂试验时，可根据毒力定出高、中、低三种浓度，彼此按2：1或3：1递减，分区进行。投饵期视药而异，急性灭鼠剂3～5d即可。慢性灭鼠剂需5～8d以至10d以上。所进行的灭鼠前调查应于临近灭鼠时完成;灭鼠后调查，须待灭鼠措施充分收效，残留鼠类恢复活动后进行。

对急性灭鼠剂效果评价，可按下列算式计算鼠类种群密度下降率。若处理前后密度调查的时间相等，以上数据可直接比较，否则需取平均值。一般灭鼠后种群密度下降70%即表示灭鼠有效。

抗凝血灭鼠剂如使用得当，其防制效果均可达100%。评价此类灭鼠剂，多以其达100%防制所需的投毒饵日数为准。测定时，每日或隔日计算鼠类曾取食的毒饵数或毒饵消耗总量，以第二日或最高一日数值为1，求每日相应比值。比值达0之日，即为100%防制所需的投饵日数。将所测数据，填于雷尼逊(Rennison)灭鼠效果检查图 (见图)，若其比值消长曲线超过标准直线回归线95%可信限的上限，须排除抗药性可能。

(A=逐日毒饵消耗量; B=第二日或最高一日毒饵消耗量。)

雷尼逊灭鼠效果检查图